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{| class="wikitable" align="right" |- | style="background: #008080" align= center| '''<big>酶切</big> ''' |- | [[File:In-Fusion2.gif|缩略图|居中|[http://www.ebiotrade.com/images/In-Fusion2.gif原图链接][http://pic.sogou.com/d?query=%E9%85%B6%E5%88%87&forbidqc=&entityid=&preQuery=&rawQuery=&queryList=&st=&did=2 来自 搜狗 的图片]]] |- | style="background: #008080" align= center| |- | align= light| |} 酶切是对粘末端的DNA分子和载体分子进行切割,以获得相应的粘末端连接。酶切可以是单酶切也可以是双酶切。单酶切操作比较简单,双酶切困难。 =='''定义'''== 酶切可以是单酶切也可以是双酶切。单酶切操作比较简单,但双酶切如果两种酶所用缓冲液成分不同(主要是盐离子浓度不同)或反应温度不同,这时可以采用如下措施解决:1)先用一种酶切,然后乙醇沉淀回收DNA分子后再用另外一种酶切;2)先进行低盐要求的酶酶切,然后添加盐离子浓度到高盐的酶反应要求,加入第二种酶进行酶切;3)使用通用缓冲液进行双酶切。具体要根据酶的反应要求进行,尽量避免活力损失。 =='''步骤'''== 一、实验材料准备 1. 材料:质粒DNA。 2. 试剂:限制性内切酶、ddH2O。 3 . 仪器:微量移液枪,离心机,水浴锅, 电泳仪,紫外透射观测仪。 二、单酶切 1. 在1.5 mL灭菌离心管中依次加入: (1)质粒DNA:X μL(约1 μg)。 (2)限制性内切酶:1 μL(约10 U)。 (3)10×buffer:2 μL。 (4)ddH2O:补足20 μL。 2. 混匀,做好标记。 3. 37℃水浴1-3 h。 4. 70℃水浴10 min中止反应。 5. 电泳检测酶切效果。 三、双酶切 1. 在1.5 mL灭菌离心管中依次加入: (1)质粒DNA:X μL(约1 μg)。 (2)限制性内切酶1:1 μL(约10 U)。 (3)限制性内切酶2:1 μL(约10 U) (3)10×buffer:1或2 μL。 (4)ddH2O:补足20 μL。 2. 混匀,做好标记。 3. 37℃水浴1-3 h。 4. 70℃水浴10 min中止反应。 5. 电泳检测酶切效果。 四、结果与分析 假若一种酶在环状质粒DNA中只有一个酶切位点, 且酶切彻底,紫外灯下检测电泳结果,则单酶切应为一条带, 而双酶切则为两条带。如果条带数目多于理论值,那么有可能是酶切不完全。如果酶切结果与酶切前的质粒条带一样(超螺旋、线性和开环三条带),则说明质粒完全没有被切开。<ref>[https://www.163.com/sports/article/FTBFN91K00058783.html 提防蛋白质摄入不足 跑者要注意5个信号],网易2020年12月8日, </ref> ==参考文献== {{reflist}} [[Category:360 生物科學總論]]
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